Das Rohgift wird in einem unabhängigen Labor mit sechs Methoden charakterisiert. Die Werte auf dieser Seite gehören zur Referenzcharge; jede Lieferung wird mit ihrem eigenen Analysebericht der Charge versandt.
Die Analyse erfolgt nicht in unserer Anlage, sondern in einem unabhängigen Labor
Dass Produktion und Messung nicht in einer Hand liegen, stärkt die Unparteilichkeit der Ergebnisse. Die Probe wird mit Chargennummer an das Labor übergeben; der Bericht wird anhand der eigenen Methoden- und Geräteaufzeichnungen des Labors erstellt.
Bei der Referenzcharge wurde die Probe am 30.06.2026 übergeben und der Analysebericht am 04.07.2026 erstellt. Warum unabhängige Analytik wichtig ist, haben wir ebenfalls beschrieben.
Charakterisierung in fünf Stufen
Probenannahme und Artregistrierung
Die Probe wird mit Chargennummer angenommen; Ausgangsart und Form werden erfasst.
Proteinkonzentration und pH
Die Proteinmenge anhand einer Standardkurve und der Säuregrad des Rohgifts werden gemessen.
UV-Vis-Spektralanalyse
Gescannt wird von 190 bis 400 nm; der proteintypische Peak bei 280 nm wird bestätigt.
RP-HPLC-Fraktionierung
Die Komponenten werden mittels Umkehrphasenchromatographie getrennt; die Peaks werden bei 280 nm aufgezeichnet.
SDS-PAGE und Peptididentifizierung
Die Molekulargewichtsverteilung wird bestimmt und das Zielpeptid auf Sequenzebene identifiziert.
Befunde der Referenzcharge
- Standardbereich
- 10–250 kDa
- Intensive Bande
- ~37 kDa
- Proteinbereich
- 10–25 kDa
- Beladungsreihe
- 5–30 µg
- Scanbereich
- 190–400 nm
- Spezifischer Peak
- 280 nm
- Spektrophotometer
- Shimadzu UV-1900i
Die Diagramme sind anhand der Berichtswerte gezeichnete repräsentative Profile und nicht maßstabsgetreu. Die Messausgaben sind Teil des Analyseberichts der Charge.
Chromatographische Bedingungen
| Parameter | Wert |
|---|---|
| Gerät | Shimadzu Prominence-i LC2030 3D |
| Methode | Umkehrphase (RP-HPLC) |
| Probenkonzentration | 1000 ppm |
| Gradient | Lösungsmittel B · flacher Gradient 0–60 % |
| Detektion | 280 nm |
| Aufgelöste Fraktionen | 37 |
Identifiziertes Zielpeptid
α-KTx-Familie · Kv-Kanalblocker
α-KTx 3.6
- rKv1.1
- rKv1.2
- hKv1.3
Aminosäuresequenz (Cysteine hervorgehoben)
FTNVSCTTSKECWSVCQRLHNTSRGKCMNKKCRCYS
- Länge
- 36 Aminosäuren
- Cystein
- 6
- Klasse
- α-KTx
Wie die Sequenz zu lesen ist, erfahren Sie im Leitfaden zu den Einbuchstabencodes der Aminosäuren, zur Peptidfamilie im Beitrag zu α-KTx.
Durchgeführte Analysen
| Analyse | Zweck | Ergebnis |
|---|---|---|
| UV-Vis-Spektrophotometrie | Bestimmung der Wellenlänge des Absorptionsmaximums | Spezifischer Peak bei 280 nm |
| pH-Analyse | Säuregrad des Rohgifts | pH 5,72 |
| Proteinkonzentration | Mengenbestimmung anhand der Standardkurve | 28 mg/mL |
| SDS-PAGE | Molekulargewichtsverteilung | 10–25 kDa + Bande bei 37 kDa |
| RP-HPLC | Komponententrennung und Fraktionierung | 37 Proteine / Peptide |
| Peptidanalyse | Identifizierung des Zielpeptids auf Sequenzebene | α-KTx 3.6 · Kv1.1 / Kv1.2 / Kv1.3 |
Datenintegrität. Die Werte auf dieser Seite wurden aus dem Referenzchargenbericht des unabhängigen Labors übernommen und können je nach Charge variieren. Für Kaufentscheidungen ist der Chargenbericht der jeweiligen Lieferung maßgeblich; der Bericht wird auf Anfrage auch vor der Bestellung zur Verfügung gestellt.
Häufig gestellte Fragen
Die Analysen werden nicht in der Produktionsanlage, sondern in einem unabhängigen Labor durchgeführt. Bei der Referenzcharge wurde die Probe am 30.06.2026 übergeben und der Analysebericht am 04.07.2026 erstellt.
Mittels RP-HPLC wurden bei Detektion bei 280 nm 37 Protein- und Peptidfraktionen aufgelöst. Die Proteinkonzentration wurde mit 28 mg/mL, der pH-Wert mit 5,72 gemessen.
α-KTx 3.6 ist ein Peptid aus 36 Aminosäuren mit 6 Cysteinen, das spannungsgesteuerte Kaliumkanäle (Kv) blockiert. Als Zielkanäle sind rKv1.1, rKv1.2 und hKv1.3 berichtet.
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